8

3。3施用微生物菌剂对土壤中速效钾的含量的影响 9

3。4施用微生物菌剂对土壤中有机质的含量的影响 10

结  论 11

参 考 文 献 12

致 谢 13

1前言

黄瓜枯萎病也称萎蔫病、死秧病,它是一种经由土壤传染的系统性病害,从黄瓜的根或根颈部侵入维管束并寄生于其中。是尖镰孢菌黄瓜专化型病原,属于半知菌类真菌一类。较典型的症状是萎蔫[1],大多发生在开花结果期或者黄瓜采收后,一般发病情况先出现于较接近地面的茎基部叶片,在中午时呈少水状的部分或植株一侧的叶片变得萎蔫,早、晚又变得正常,经过一段时间后,萎蔫的叶片从下到上不断变多,慢慢波及全株,直到不能再恢复。茎基部的叶片呈现如浸在水中的样子,软化缢缩[2],慢慢变干,表皮纵裂如麻,植株枯死。其维管束呈褐色,可以通过横向切病茎观察来看见。

黄瓜枯萎病发生很普遍,也是在黄瓜生产过程中很难防治的病害之一,往往造成很大的损失。如今已有多种可以防治黄瓜枯萎病的方法,如:选用抗病品种、种子消毒、床土消毒、嫁接防病、嫁接育苗、合理轮作、加强栽培管理、生物防治、适时用药控病[3]等。

目前,生物防治方法已经取得不错的进展,且不污染环境,利于可持续发展。本实验用生防菌剂进行灌根处理的黄瓜根围土壤作为处理组,未被处理的黄瓜根围土壤为对照组,将不同取样时间的土壤对照组与处理组进行滴定、比色实验,对比实验数据,探讨其施用后对根围土壤营养成分的影响,从而能够综合防治黄瓜枯萎病。论文网

2 材料与方法

2。1 实验设计

本研究以设施栽培黄瓜作为研究对象,在黄瓜移栽时利用本实验室现有微生物菌剂“宁盾”进行灌根处理,并在移栽后1、2、3个月时分别采集黄瓜根围土壤进行检测。以未使用微生物菌剂的黄瓜作为对照组,处理组和对照组实验小区随机分布,每个处理3次重复,每个重复小区面积3*2m2。处理组分别标记为T0-1, T0-2, T0-3, T1-1, T1-2, T1-3, T2-1, T2-2, T2-3; 对照组分别标记为C0-1, C0-2, C0-3, C1-1, C1-2, C1-3, C2-1, C2-2, C2-3。

2。2 土壤采集方式

整个土壤采集过程采用三点取样法,每个小区等距离选取黄瓜植株三株,首先将黄瓜植株拔出,轻轻抖动以去除粘附的大量土壤,再利用毛刷轻轻刷下紧贴在黄瓜根部的根围土,三株黄瓜样品混合在一起,装入塑封袋放在冰盒中带回实验室,样品前期处理后研磨过2mm筛。进行土壤总DNA 的提取、进行PCR-DGGE分析,部分置于阴凉通风处自然干燥至恒重,用作土壤理化性质及酶活性检测。剩余的则置于-20℃冰箱保存备用。文献综述

2。3土壤中水碱性氮的测定(碱解扩散法)

2。3。1 实验材料

实验仪器:扩散皿、微量滴定管、1/1000分析天平、恒温箱、玻璃棒、毛玻璃、皮筋、吸管(2mL和10mL),腊光纸、角匙、瓷盘。

实验试剂:1。8mol/L氢氧化钠溶液、1。2mol/L氢氧化钠溶液、2%硼酸溶液、0。01mol/L盐酸标准溶液、定氮混合指示剂、特制胶水、硫酸亚铁(粉状)。

2。3。2 实验方法

在天平上称取2g土样和1g硫酸亚铁粉剂,均匀倒入扩散皿的外室,水平握住扩散皿,轻轻旋转,让样品铺得平整。再吸取2mL2%硼酸溶液到吸管内,加进扩散皿的内室,再滴入1滴定氮混合指示剂,然后再将特制阿拉伯胶水用玻璃棒蘸取均匀涂抹于扩散皿的外室边缘,盖上毛玻璃,旋转,使毛玻璃完全粘合于扩散皿边缘,再将毛玻璃一边慢慢旋转开,等到扩散皿露出缝隙时,快速使用移液管取10mL1。8mol/LNaOH溶液,加入扩散皿的外室,盖紧毛玻璃[4]。将扩散皿水平旋转,皿内溶液与土样即可充分混合均匀。最后用橡皮筋捆绑、固定扩散皿,放进40℃恒温箱中静置。放置24h后取出,用微量滴定管滴定0。01mol/L HCl标准溶液,溶液由蓝色变为微红色即可,记下盐酸毫升数V(mL)。同时需要准备空白对照,滴定时用的盐酸量记为V0。来-自~优+尔=论.文,网www.youerw.com +QQ752018766-

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