稀释液保存温度及稀释倍数对湖羊精液保存效果的探究(3)
1.5.2 射精量
湖羊射精量为0.5-2.0ml,一般情况下为1.0ml[10]。
1.5.3精子密度计算
将原精液用3%的NaCl溶液稀释至200倍，用血球板计数法计算其密度大小。1ml湖羊精液内的精子数量大约为20亿-30亿[10]。假如采集的精液过于稀疏，将影响试验结果，应该给公羊打上标记，另采一头。
1.5.4 精子活力测定
精子活力指直线运动中的精子数占视野中精子数的百分比[11]。检测活力为0.8以上的才可以使用，不合格的精液不予使用，给公羊打上标记，另采一头。
1.6精液处理
1.6.1保存温度的筛选
临采精前，将已配置好的Optidyl稀释液从冰箱取出，置于37℃恒温水浴锅中备用。采精后，迅速将镜检合格的精液平均分配到试管内。用已预热的Optidyl液对精液进行8倍稀释后置于4℃、8℃、12℃下保存，前期每隔4小时镜检精子活力一次，后期每隔8-12小时观察一次，直至精子活力低于0.3，停止观察。每次试验做2次重复。
1.6.2稀释倍数的筛选
临采精前，将已配置好的Optidyl稀释液从冰箱取出，置于37℃恒温水浴锅中备用。采精后，迅速将镜检合格的精液平均分配到试管内。用已预热的Optidyl液对精液进行8倍、15倍、150倍稀释后置于4℃冰箱保存，前期每隔4小时镜检精子活力一次，后期每隔8-12小时观察一次，直至精子活力低于0.3，停止观察。每次试验做2次重复。
1.6.3稀释液种类的筛选
临采精前，将已配置好的5种精液稀释液（A、B、C、D、E）从冰箱取出，置于37℃恒温水浴锅中备用。采精后，迅速将镜检合格的精液平均分配到试管内。用已预热的5种精液稀释液（A、B、C、D、E）对精液进行8倍稀释后置于4℃冰箱内保存，前期每隔4小时镜检精子活力一次，后期每隔8-12小时观察一次，直至精子活力低于0.3，停止观察。每次试验做2次重复。