1  材料与方法
1.1实验材料
1.1.1 酵母菌株与载体
酵母菌株:yod、Δycf1
载体及感受态:大肠杆菌E.coli DH5α、pMD19-T Vector
1.1.2 植物材料
玉米品种:农大108
选取颗粒饱满均一的种子泡在水中过夜,第二天均匀地铺在垫有软纸的白色瓷盘上,洒水使其处于湿润状态,置于温室暗处培养。约两昼夜后,待其处于萌芽状态,选取萌发状态,根长芽长较为一致的玉米种子置于培养箱中水培培养。待农大108长到三叶期后,用100 μM浓度的CdCl2处理24 h,然后用于下一步实验。
1.2仪器与试剂
DEC-810BS-196型PCR仪、恒温培养箱、TG16-W型台式高速离心机(湖湘仪),AllegraTM6R型水平离心机(Beckman)、水平摇床、HE-120水平电泳槽(上海天能科技有限公司),PowerPac3000电泳仪(Bio-rad)、SW-CJ-1FD型超净工作台(苏净集团安泰公司),DK-S26型水浴锅(上海精密实验设备有限公司)、SDS-PAGE垂直板状电泳系统。
 TaKaRa LA Taq DNA聚合酶、GC buffer、dNTP、oligo(dT)、快切酶、DNA Marker,-Ura DO Supplement、-Leu DO Supplement、腺嘌呤sigma产品、Yeast Nitrogen Base W/O(YNB)、凝胶回收纯化试剂盒、质粒小量提取试剂盒。
1.3培养基
Leu单缺培养基、YPDA培养基、0.1mol/LCdCl2母液、50%PEG、 1M LiAc、10×TE sterile、玉米培养A液(Ca(NO3)2▪4H2O,KNO3配制)、玉米培养B液(KH2PO4,MgSO4▪4H2O配制)、玉米培养C液(H3BO3,MnSO4▪H2O,CuSO4▪5H2O,ZnSO4▪7H2O,Na2SO4▪2H2O配制)、玉米培养D液(EDTA▪2Na,FeSO4▪7H2O配制)。
1.4 实验方法
1.4.1 酵母感受态的制备与转化
(1)将保存的Δycf1菌在YPDA固体培养基上划线,在30℃培养箱中倒置培养;
(2)将长势好的单菌落在超净台内转接入5mLYPDA液体培养基中,30℃培养箱,200rpm,过夜培养;
(3)取过夜培养的菌液5µL转接到50mLYPDA液体中,30℃,200rpm在摇床中震荡培养16-20小时,摇至OD600=0.3-0.5。;
(4)将菌液于50mL离心管中离心,1000rpm,5min,去尽上清,将沉淀转移至100mL YPDA液体培养基中,30℃,200-250rpm 震荡培养3h左右,摇至OD600=0.4-0.5;
(5)离心,去上清,用无菌水重悬,1000rpm离心5min,收集菌体;
(6)每50mL菌液加入1.5mL TE/LiAc,转移至2mL离心管中后12000rpm 离心15s;
(7)去掉上清,加入600µL TE/LiAc溶液,即可得到酵母感受态细胞。
(8)转化:将1µL pGADT7空载或4µL文库质粒、5µL鲑鱼精DNA、50µL感受态细胞、300µL PEG/LiAc混合,放置在30℃培养箱中30min,期间每10min取出并轻轻摇匀;之后加入二甲基亚砜20µL,置于42℃水浴锅中热激20min,10min时混匀;取出放置在冰上冷却,然后12000rpm快速离心,弃上清,加入200µL 生理水或1xTE。
(9)将pGADT7空载或文库质粒均匀涂布于含CdCl2的缺Leu单缺培养基上,于30℃恒温培养箱中倒置培养,让其生长2-3天。
1.4.2 确定镉的浓度
将pGADT7空载转入Δycf1中,设置Cd离子的浓度为0、10、20、40、50、100µM,观察酵母生长状况。 CdCl2浓度为40µM时空载酵母不再生长,确定筛选浓度为CdCl2浓度40µM。

1.4.3 菌落PCR
菌落PCR体系:
  Total                 15 uL
2×Es Taq Mix       7.5 uL
上游引物           1 uL
下游引物           1 uL
ddH2O             5.5 uL
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